DIRECCIÓN GENERAL DE EDUCACIÓN TECNOLÓGICA INDUSTRIAL.
CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO industrial y de
servicios No. 26
Preparación de Operaciones Básicas Para Laboratorio.
Práctica No. 3: Examen Coproparasitoscopico Directo.
DATOS DEL ALUMNO:
Yescas Pacheco Tania Mónica.
2do “Q”, Laboratorio Clínico.
Equipo: “E” No. de lista: 48.
Correo: taaniamonica@gmail.com
Oaxaca de Juarez, Oax. a 20 de mayo de 2014.
PRÁCTICA NO. 2: EXAMEN COPROPARASITOSCÓPICO
(TÉCNICA DIRECTA).
Propósito: Elaborar un examen coproparasitoscópico
por método directo.
Introducción:
TOMA DE MUESTRA PARA EXAMENTOMA DE MUESTRA PARA EXAMEN
COPROPARASITOSCOPICOCOPROPARASITOSCOPICO
Regularmente en el áreade Parasitologia , las muestras
más analizadas parademostrar la presencia de parasitos intestinales del hombre son
las heces fecales.
HECES FECALES FECALES SOLIDAS SOLIDAS ::
ü Condiciones del paciente : Durante al
menos tres días previos a la prueba el paciente deberá evitar tomar
medicamentos (antiparasitarios , antibióticos, antidiarreicos ,laxantes o
purgantes en caso de ser necesario deberán emplearse unpurgante salino, como
sulfato de sodio o fosfato y carbonato de sodio. Por ningún motivo deberán
emplearse aceites minerales o compuestos debismuto o magnesio, ya que las gotas
o cristales procedentes de ellos pueden confundirse con algunos parásitos o
enmascarar su presencia.
ü Frasco estéril de boca ancha con tapa
de rosca.
ü Cantidad de muestra requerida :
3-6 grs
ü Toma de muestra : La muestra deberá
ser recolectada de la siguientemanera :
Con una abatelenguas tome directamente
de la cavidad anal unvolumen de heces aprox. entre 3
-6 grs (equivalente al tamaño deuna nuez )
ü NOTA:
Evite la contaminación de la muestra
con orina , papel higiénico. jabón , aguaotierra.
Transfiera las heces obtenidas al
contenedor estéril.
Cierre el envase herméticamente de
forma inmediata para evitar contaminaciones bacterianas
A continuación identifique. el frasco con una
etiqueta autoadhesivallenándola claramente con su nombre, apellidos, edad y
fecha y hr de toma de la muestra.
NOTA: Pegue la etiqueta al frasco NUNCA en la tapadera .
• Finalmente lleve la muestra al laboratorio lo más pronto posible.
NOTA :
Cuando la muestra va a demorar en llegar al laboratorio varias horas o
días ,se recomienda adicionarle liquido fijador y/o conservador ( formalina al
10 % , por ejemplo )
NOTA :
Para aumentar la eficacia de la prueba se recomienda
que para estudiosparasitoscoscopicos
se recolecten un total de
tres muestras en 3 dias consecutivos
ya que la expulsión de parásitos puede ser intermitente .
Criterios de rechazo :
-Que el paciente no haya tomado la muestra respectivamente de
formaadecuada .
-Que la muestra haya sido llevada al laboratorio con mas de 1
hr dehaber sido tomada o no haya sido adecuadamente conservada.
EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO DIRECTO:
El
método directo es el mas antiguo que
se conoce y fue el primero utilizado por Antonio Van Lewenhooke en el
siglo XVIII observando trofosoitos de Giargia Lambía.
Materiales:
-Agitador
de madera.
-Portaobjetos.
-Gasas.
-Papel
estraza
-Cubreobjetos.
Aparatos:
-Microscopio.
Sustancias:
-Lugol.
-Solución
salina.
Muestras biológicas:
-Heces
fecales.
¿Qué materiales ocupé?
AGITADOR DE MADERA.
El agitador es
un instrumento de laboratorio, el cual
consiste en una varilla
normalmente de vidrio, se usa en el laboratorio para mezclar o revolver algunassustancias químicas.
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PORTAOBJETOS.
Un portaobjetos es una fina placa de cristal sobre el cual se disponen
objetos para su examen microscópico. Sus dimensiones típicas son de 75 mm x
25 mm. El objeto a observar suele disponerse sobre este artefacto para
después situarse en el microscopio y ser observado. En ocasiones puede
cubrirse la muestra con un cubreobjetos, una hoja de cristal.
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PAPEL DE ESTRAZA
El
papel de estraza, papel madera o papel kraft, es un tipo de papel basto y
grueso de color marrón.
Está
fabricado con pasta química, sin blanquear y sometido a una cocción breve.
Muy resistente al desgarro, tracción, estallido etc.
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CUBREOBJETOS:
Un
cubreobjetos es una fina hoja de material transparente de planta cuadrada
(normalmente 20mm x 20mm) o rectangular (de 20 mm x 40 mm habitualmente). Se
coloca sobre un objeto que va a ser observado bajo microscopio, el cual se
suele encontrar sobre un portaobjetos. Sirve para: cubrir los objetos que
estén en el portaobjetos que a su vez está en un objeto llamado microscopio o
'microscopius' en latín. También es de carácter laboratorico.
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SUSTANCIAS
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LUGOL
El lugol o disolución de Lugol es una disolución de yodo molecular I2
y yoduro potásico KI en agua destilada. Se preparó por primera vez en 1829 y
recibe su nombre en honor al médico francés J.G.A. Lugol
Este producto se emplea frecuentemente como desinfectante y
antiséptico, para la desinfección de agua en emergencias y como un reactivo
para la prueba del yodo en análisis médicos y de laboratorio.
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SOLUCIÓN SALINA
La solución salina a menudo se hace en el
laboratorio para diluir las muestras que van a ser examinadas. La solución
salina debe ser estéril y estar adecuadamente mezclada para poder usarse. No
uses agua corriente para hacerla. Para prevenir la contaminación, esteriliza
los materiales. Puedes hacerla en grandes cantidades y guardarla para
experimentos.
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METODO
DIRECTO.
Investigación:
Método
Directo: Este método permite buscar principalmente en
muestras frescas, la presencia de formas evolutivas móviles de parásitos de
tamaño microscópico( trofozoitos, quistes de protozoos: Entamoeba
histolytica,Giardia lamblia(duodenalis) ,Balantidium coli etc, así como larvas
o huevos de helmintos: Strongyloides stercolaris, Ancylostoma duodenale,
Necator americanus,Paragonimus,Fasciola etc
Este
método solo sirve para evidenciar la presencia de un determinado parasito, y se
trata de un método cualitativo, que no permite conocer el numero de formas
larvarias o trofozoítos que hay en cada gramo de heces, y por los tanto la
carga parasitaria.
TÉCNICA:
En un extremo de un
porta objetos se colocan 1 o 2 gotas de solución salina, en otro extremo del
porta objetos se colocan 1 o 2 gotas de lugol, después se colocan una pequeña
muestra de materia fecal y luego se esparcen hasta dejarla semiliquida y se
observa en el microscopio.
¿Cómo lo hice?
Recomendaciones para el
paciente: Toma de la muestra
La
muestra de material fecal (diarreica, pastosa o formada) debe ser reciente
(<24 hrs). Las heces obtenidas del suel, excusado o pañal no son aceptadas
por la contaminación ambiental a que fueron expuestas. Las muestras enviadas
tanto en hisopo rectal (a menos que el paciente no pueda evacuar) como en
frascos de vidrio serán rechazadas.
Si la
materia fecal es solida o semi-solida tomar una cantidad que no debe exceder el
tamaño equivalente de una nuez o de 2 a 5 g; sí es líquida bastan 3 a 10 ml.
Depositarla
en un recipiente de plástico no estéril, de boda ancha y tapa de rosca con sello
de seguridad para evitar derrame.
Procedimiento:
1. Rotulé
el frasco de la muestra que iba a analizar y lo registré en mi bitácora.
2. Fui a pedir el material antes mencionado al
laboratorio.
3. En
un portabjetos coloqué una gota de solución salina en un extremo y en el
opuesto una gota de lugol.
4. Con
el equipo de protección puesto [Bata, guates, gafas y cubrebocas] y con ayuda
del agitador de madera obtuve una pequeña porción del frasco que contenía la muestra de heces fecales.
5.
Esparcí con el agitador de madera la muestra sobre la gota de solución salina e
hice lo mismo sobre la gota de lugol.
6. Sobrepuse
un portaobjetos sobre cada gota.
7.
Observé al microscopio.
Está imagen es del frotis de heces fecales con solución salina: Sólo se puede ver una gota de agua atrapada, restos de grasa y fibra.
Esta imagen es de la misma muestra que la imagen anterior, lo que varia es el objetivo al que está enfocada.
En la fotografía se puede apreciar una muestra distinta, sin presencia de parásitos.
Al igual que en las anteriores tomas, la muestra expuesta aquí no contiene huevos o parásitos, solo restos de alimentos o fibra.
No hay presencia de bacterias, solo se ven gotas de la solución salina que quedaron atrapadas entre el portaobjetos y el cubreobjetos.
En mi equipo no hubo ningún caso donde la muestra presentara actividad anormal o parasitosis, como se muestra a continuación en todos los casos solo visualizamos residuos de grasa, fibras y filamentos de la comida.
Esta imagen es de la misma muestra que la imagen anterior, lo que varia es el objetivo al que está enfocada.
En la fotografía se puede apreciar una muestra distinta, sin presencia de parásitos.
Al igual que en las anteriores tomas, la muestra expuesta aquí no contiene huevos o parásitos, solo restos de alimentos o fibra.
No hay presencia de bacterias, solo se ven gotas de la solución salina que quedaron atrapadas entre el portaobjetos y el cubreobjetos.
En mi equipo no hubo ningún caso donde la muestra presentara actividad anormal o parasitosis, como se muestra a continuación en todos los casos solo visualizamos residuos de grasa, fibras y filamentos de la comida.
¿Cuánto gané?
$103.50 + $116.50 = $220.00
(Diagsa, 2013)
$103.50 + $116.50 = $220.00
(Diagsa, 2013)
¿Qué dificultades tuve?
El microscopio que le dieron a mi equipo no funcionaba
correctamente, ya que no se podía visualizar nada y todo lo que se veía era
color rosa o morado. Aunado a esto, la luz no carecía de potencia.
¿… y cómo lo resolví?
Fui a
cambiar el equipo al laboratorio.
¿Que aprendí?
En la práctica anterior
aprendí a realizar el examen coproparasitoscopico directo pero esta ocasión
tuve la oportunidad de familiarizarme más con el método directo, adquirí mayor
experiencia.
Me gusto el hecho
de que trabajáramos por equipo pero que cada quien realizara su estudio
individualmente porque pude hacerlo por mí misma.
Aprendí la
importancia de llevar el control de los estudios por medio de una bitácora, lo
cual es de mucha ayuda cuando hay muchas muestras que analizar.
Entendí que las
muestras y los materiales que las contengan deben estar rotulados para evitar
una confusión.
Otra cosa que
aprendí es a enfocar mediante coordenadas, esto ahorra mucho tiempo a la hora
de volver a observar una muestra al microscopio.
Puse en práctica el
sentido de la responsabilidad al desechar correctamente mis muestras y ayudar
al resto de mi equipo a desechar las suyas.
Que el lugol está
compuesto por 20 gramos de yodo metálico y 40 gramos de yoduro potásico,
disueltos en 1 litro de agua destilada
¿Investigación científica que sustenta mi
trabajo, de fuentes con fiables?
Este método permite buscar principalmente en
muestras frescas, la presencia de formas evolutivas móviles de parásitos de
tamaño microscópico( trofozoitos, quistes de protozoos:
Entamoeba histolytica,Giardia lamblia(duodenalis)
,Balantidium coli etc,
así como larvas o huevos de helmintos:
Strongyloides stercolaris, Ancylostoma
duodenale, Necator americanus,Paragonimus,Fasciola etc)
METODO:
a)En un portaobjetos limpio y desengrasado,
se colocan separadamente, unagota de solución salina y otra de lugol.
b)Con el aplicador de madera se toma una
muestra de 1 a 4 mg de heces 8 enmuestras con sangre y moco elegir esa parte
para estudiar) y se mezcla con lasolución, con el mismo aplicador se retiran
las fibras y otros fragmentosgruesos, procurando hacer una suspensión no un
frotis.
c)Colocar el cubreobjetos.
d)Repetir estas operaciones en la gota de
lugol.
e)Observar al microscopio con objetivos de
10X y 40X. No es recomendable usar objetivo de inmersión (100 x) , pues se
puede ensuciar el microscopio.Recorrerla lamina siguiendo un sentido
direccional , ejemplo :de derecha aizquierda , o de arriba abajo.
NOTA:
Con el suero fisiológico, los trofozoitos y
quistes de los protozooarios se observanen forma natural , y con lugol , las
estructuras internas , núcleos y vacuolas.
INTERPRETACION DE RESULTADOS:
Se informará detalladamente la presencia de
alguna forma parasitaria observadadurante el análisis coproparasitoscopico ,
indicando su especie y estado evolutivo (trofozoito, quiste en caso de un
protozoo) ó (huevo , larva en caso de un helminto).
Fuentes:
(2012, 01). Coprocltivo. Wikipedia. Recuperado 05, 2014, de es.wikipedia.com/coprocultivo
Hernández Hernández, M. (2009, 02). MANUAL DE PARASITOLOGÍA. Scribd. Recuperado 05, 14 de
http://es.scribd.com/doc/5275620/MANUAL-DE-PARASITOLOGIA
(2013) Lista de precios. Diagsa. Recuperado 05, 2014, de http://www.diagsa.com.mx/Precios/precios.html
(2012, 01). Coprocltivo. Wikipedia. Recuperado 05, 2014, de es.wikipedia.com/coprocultivo
Hernández Hernández, M. (2009, 02). MANUAL DE PARASITOLOGÍA. Scribd. Recuperado 05, 14 de
http://es.scribd.com/doc/5275620/MANUAL-DE-PARASITOLOGIA
(2013) Lista de precios. Diagsa. Recuperado 05, 2014, de http://www.diagsa.com.mx/Precios/precios.html
EXAMEN
COPROPARASTOSCÓPICO POR METODO DIRECTO.
Paciente: Laura
Martínez. Edad: 19 años Sexo: F Tel: --
DX:
Dr.: A QUIEN
CORRESPONDA Tel:---
ANÁLISIS SOLICITADO: EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO POR METODO
DIRECTO.
RESULTADO: NO SE
ENCONTRO INDICIO ALGUNO DE EXISTENCIA
DE PARASITOS. SOLO SE PUDO OBSERVAR RESIDUOS DE GRASA.
OBSERVACIONES:
FECHA:19/05/14 RESPONSABLE
TANIA MÓNICA YESCAS PACHECO.
EXAMEN COPROPARASTOSCÓPICO POR METODO DIRECTO.
Paciente:Matías Sebastian
Edad: 16 años Sexo: M Tel:----
DX:
Dr.: A QUIEN
CORRESPONDA Tel:----
ANÁLISIS SOLICITADO: EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO POR METODO
DIRECTO.
RESULTADO: NO SE
ENCONTRO INDICIO ALGUNO DE EXISTENCIA
DE PARASITOS. SOLO SE PUDO OBSERVAR RESIDUOS DE COMIDA.
OBSERVACIONES:
FECHA: RESPONSABLE
DANIELA GARCÍA LABASTIDA.
EXAMEN
COPROPARASTOSCÓPICO POR METODO DIRECTO.
Paciente: Aylin Valeria Fernandez Edad:16 años
Sexo: F Tel:----
DX:
Dr: A QUIEN CORRESPONDA
Tel:----
ANÁLISIS SOLICITADO: EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO POR METODO
DIRECTO.
RESULTADO: NO SE ENCONTRO INDICIO ALGUNO DE EXISTENCIA
DE PARASITOS. SOLO SE PUDO OBSERVAR PARTICUCULAS DE FIBRA.
OBSERVACIONES:
FECHA: RESPONSABLE
KAREN ANELY MARICHE HERNANDEZ
EXAMEN
COPROPARASTOSCÓPICO POR METODO DIRECTO.
Paciente: Edad: Sexo: Tel:
DX: Dr.: Tel:
ANÁLISIS SOLICITADO: EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO POR METODO
DIRECTO.
RESULTADO: NO SE OBSERVARON PARASITOS.
OBSERVACIONES:
FECHA: RESPONSABLE
FERNANDA MONTERO LÓPEZ.
EXAMEN
COPROPARASTOSCÓPICO POR METODO DIRECTO.
Paciente: Edad: Sexo: Tel:
DX: Dr.: Tel:
ANÁLISIS SOLICITADO: EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO POR METODO
DIRECTO.
RESULTADO: NO SE OBSERVARON PARASITOS.
OBSERVACIONES:
FECHA: RESPONSABLE
PAULINA CANSECO JIMENEZ .
EXAMEN
COPROPARASTOSCÓPICO POR METODO DIRECTO.
Paciente: Rafael Santiago Cruz Edad: 1 año Sexo:
M Tel:---
DX:
Dr.: A QUIEN CORRESPONDA
Tel:---
ANÁLISIS SOLICITADO: EXAMEN COPROPARASITOSCOPICO POR METODO
DIRECTO.
RESULTADO: NO SE ENCONTRO INDICIO ALGUNO DE EXISTENCIA
DE PARASITOS. SOLO SE PUDO OBSERVAR RESIDUOS DE fIBRA.
OBSERVACIONES:
FECHA: RESPONSABLE
SAMARA JIMENEZ LESCAS.